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植物硝酸还原酶(NR)活性检测试剂盒 HZN5040

植物硝酸还原酶(NR)活性检测试剂盒

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 植物硝酸还原酶(NR)活性检测试剂盒

 产品简介:

硝酸还原酶(Nitrate Reductase,NR,EC1.7.1.3)广泛存在于植物中,是植物硝态氮转化为氨态氮的关键酶,它的活性高低直接影响到植物对土壤中硝态氮素的利用,影响作物的产量和品质。硝酸还原酶是一种诱导酶,通常在有 NO3-存在时,会诱导硝酸还原酶的活性。

测定原理:NR催化硝酸盐还原为亚硝酸盐,NO3ˉ+NADH→ NO2ˉ +NAD++H2O;产生的亚硝酸盐能够在酸性条件下,与对–氨基苯磺酸α-萘胺定量生成红色偶氮化合物; 生成的红色偶氮化合物在 540 nm有最大吸收峰,可用分光光度法测定。

按照每次提取使用1 ml提取缓冲液计算,该产品可以使用45-50次。

● 贮存和效期:

  试剂盒常温运输;按照标签温度贮存;开封使用后有效期一年。

● 自备材料:

植物根茎、叶子等;剪刀;离心管;分光光度计;水浴锅;离心机;1ml比色皿

● 操作步骤:

用前必读:由于不同材料NR活性差距较大,首次实验时建议取2-3个预期差异较大的样本做预测定。

准备30度水浴;分光光度计调节到540nm,开机预热30分钟。

 样本处理:

1. 样品的诱导前处理:

将NR诱导剂(50×)用蒸馏水稀释50倍,如取49 ml蒸馏水加入1 ml 诱导剂。 将植物样品浸泡于诱导剂中,浸泡2小时。

注:如未经诱导,植物体内NR活性很低,预测定结果没有活性(OD测定管OD对照管)则需要诱导处理。

 硝酸还原酶提取:

2. 即用型NR提取缓冲液配制:


一个反应配制体积 1 ml

n个反应配制体积 n×1 ml

试剂2-NR提取缓冲液(2×)

0.5 ml

n×0.5 ml

1 M DTT100×

10 μl

n×10 μl

灭菌水

0.49 ml

n×0.49 ml

注:配制好的即用型NR提取缓冲液可以4℃短期保存一周;

3. NR提取步骤

取诱导后的样品或新鲜植物组织,清洗干净,擦干,液氮中研磨,1 cm2叶片(1分硬币大小)或0.1g叶片粉末加入1 ml 即用型NR提取缓冲液,颠倒混匀, 12000rpm4℃离心 5分钟,上清即为NR提取液,冰浴放置备用。

注:NR提取液最好立即测定,不建议保存。

、硝酸根还原步骤:

4. 即用型标准液配制:

取试剂7-标准液(100×)稀释100倍,即取10 μl加990μl灭菌水中,混匀,即用型标准液浓度为0.1 μmol/ml(100 μM)。

5. 即用型NADH配制:

   根据标签所示加入超纯水配制试剂4-NADH(10×),稀释10倍,如取100 μl加900 μl灭菌水,混匀,冰浴备用。

6. 参考下表设置检测反应体系,按照顺序在1.5ml离心管中依次加入试剂(单位μl):

加入顺序


1#测定管

2#对照管

3#标准管

4#空白管

1

NR提取液(样本)

100

100

-

-

2

即用型标准液 0.1 μmol/ml(100 μM)

-

-

100

-

3

蒸馏水

-

125

-

125

4

试剂3-NR分析缓冲液

375

375

375

375

5

即用型NADH

125

-

125

-

6


30度水浴0.5小时

7

试剂5-显色液1

250

250

250

250

8

试剂6-显色液2

250

250

250

250

9


混匀,常温显色0.5 小时

四、计算:

7. 用蒸馏水调零分光光度计,取1ml加到比色皿中,分别测定各管在540nm的吸光值,记录读数。

NR单位定义(Units):每小时每克鲜重样品中催化产生1μmol NO2-的量为一个NR活力单位。

NR活性(μmol/h/g FW)=(测定OD-对照OD)/(标准OD-空白OD)×标准品浓度(0.1 μmol/ml)×(取样体积0.1 ml)/(样品鲜重g×反应时间0.5 h)×样品测定前稀释倍数(如0.1g叶片用1ml提取缓冲液,即稀释10倍)

此公式整理为:NR活性(μmol/h/g FW=0.2/FW×(测定OD-对照OD/(标准OD-空白OD

8. 计算举例:

0.1克植物鲜重材料使用1 ml提取缓冲液提取:稀释倍数为10

测定OD=0.159 对照OD=0.121 标准OD=0.16 空白OD=0.004

NR 活性(μmol/h/g FW)=0.2/0.1×(0.159-0.121)/(0.16-0.004)=0.012



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